При взятии крови на анализ на коже делают надрез

Весь контент iLive проверяется медицинскими экспертами, чтобы обеспечить максимально возможную точность и соответствие фактам.

У нас есть строгие правила по выбору источников информации и мы ссылаемся только на авторитетные сайты, академические исследовательские институты и, по возможности, доказанные медицинские исследования. Обратите внимание, что цифры в скобках ([1], [2] и т. д.) являются интерактивными ссылками на такие исследования.

Если вы считаете, что какой-либо из наших материалов является неточным, устаревшим или иным образом сомнительным, выберите его и нажмите Ctrl + Enter.

Биопсия кожи – это процедура, в процессе которой удаляется и обрабатывается определенный участок кожи для детального изучения под микроскопом. Рассмотрим особенности метода, технологию проведения и другие нюансы.

В процессе исследования применяют несколько методик, выбор которых зависит от размера и расположения атипичного участка, который подлежит удалению в качестве образца. Биоптат помещают в стерильный контейнер или специальный раствор для дальнейшего изучения под микроскопом. Главная особенность диагностики в том, что не требуется специальной подготовки. В некоторых случаях может быть использована местная анестезия для обезболивания.

После процедуры, длительность которой составляет 5-25 минут, на пораженный участок накладывают повязку или пластырь для предотвращения заражения. На месте отбора кожи могут возникать болезненные ощущения, которые проходят через 1-2 дня. Если на месте раны появился отек, кровотечение, сильные боли, выделения и другие болезненные симптомы, то следует обратиться за медицинской помощью. Это связано с тем, что биопсия сопровождается определенными рисками. Прежде всего, это плохое заживление ран, кровотечение, инфицирование, рубцевание и повреждение нервов. В группу риска входят пациенты с нарушениями свертываемости крови и проблемами с кровообращением, курильщики и страдающие от иммунодепрессии.

[1], [2], [3], [4], [5]

Исследование кожи относится к диагностическим методам, которые используются для постановки определенного диагноза. С его помощью можно удалить и изучить область аномального кожного покрова. Для этого используют бритвенную, пункционную и эксцизионную биопсию.

Основные показания к проведению:

Диагностика бактериальных, грибковых или вирусных инфекций.
Выявление воспалительных поражений.
Подозрения на доброкачественные новообразования.
Проверка состояния кожного покрова на месте удаления опухоли.
Красная волчанка.
Туберкулез кожи.
Рак.
Псориаз.
Склеродермия.
Амилоидоз.
Глубокий микоз.
Узелковый периартериит.
Заболевание Дарье.
Ретикулез.
Контроль эффективности лечения.

При взятии материала на исследование, обращают внимание на локализацию места поражения. Необходимый образец помещают в раствор, а при подозрениях на инфекцию в стерильный контейнер. Ткани обрабатываются и изучаются под микроскопом на предмет патологий.

Чаще всего диагностику проводят для выявления рака, который сопровождается изменением пигментации и плохим заживлением ран. Своевременное выявление недуга позволяет провести лечение на ранней стадии, предупредив возможные последствия.

Биопсию кожи проводят с помощью специального инструмента. Существует много методик проведения диагностики, поэтому используемое оборудование различается. Как правило, это одноразовый комплект инструментов, который содержит канюлю с отверстием, зонд и подвижную трубку, которая устанавливается в канюле. На конце трубки специальный выступ в виде кольца, используемый для введения в отверстие в стенке и удерживания тканевого образца. Зонд устанавливают в канюлю, на концах которой есть трубки с головками. При необходимости головки соединяются. Это уменьшает травматизацию в процессе забора образца и сохраняет его макроскопические и микроскопические свойства.

При пункционной биопсии ткани извлекаются специальной иглой. Она имеет несколько сантиметров в дину, а цилиндр шприца диаметром равен обычной скрепке. Внутри игла полая, что позволяет извлекать и захватывать ткани. Особенность инструментов в том, что они имеют широкий диапазон размеров для взятия образцов с любого участка кожи. Ребристая рукоять позволяет надежно удерживать в руке и контролировать процедуру. Все инструменты абсолютно стерильны (исключает инфицирование), имеют стальную острую бритву для минимальной травматизации тканей.

Для проведения биопсии используется несколько типов игл:

Тонкая игла со шприцом (тоньше игл для забора крови из вены).
Автоматическая, режущая с пружинным механизмом. Состоит из толстой иглы, которую вставляют в ячейку с оболочкой, присоединенной к механизму.
Вакуумная для аспирационной биопсии – позволяет брать крупные образцы ткани.

Диаметр иглы может быть от 2 до 8 мм. Если для гистологического исследования берут целые сегменты ткани, то используют полую иглу. Она содержит канюлю с кромкой или специальный зонд для разрезания ткани и введения в выбранную часть тела. Биоптат помещается в цилиндрический канал и удерживается там с помощью всасывающих или механических средств. Полученный образец имеет вытянутую цилиндрическую форму. Образцы должны максимально точно отражать структуру живой ткани.

Существуют специальные автоматизированные устройства, применяемые для пункционной биопсии. Данная технология получила название «игла правильного разреза». Она содержит канюлю с острой кромкой и внутренний зонд с полуцилиндрическим углублением возле острия. Существенный недостаток такого инструмента в том, что он позволяет брать ткани, объем которых равен половине объема канюли. Кроме того ухудшается качество образца, так как зонд проходит через исследуемую область.

Методика проведения исследования представляет собой иссечение небольшого участка кожного покрова или забор тканей под местной анестезией для дальнейшего изучения. На сегодняшний день используют три методики:

С помощью скальпеля или специального лезвия берут поверхностный срез очага поражения. То есть выступающую часть патологического элемента срезают и помещают в раствор формалина. Место среза обрабатывают стерильной салфеткой для предупреждения кровотечения.

С помощью данного метода из центральной части пораженного участка берут столбик ткани с кожей и подкожной жировой клетчаткой. В области проведения процедуры кожу растягивают и протыкают трепанационной иглой, постепенно вращая ее вокруг своей оси. Игла извлекается, а образовавшийся столбик ткани подтягивают пинцетом и подсекают на уровне жировой клетчатки. Если раневая поверхность не превышает 3 мм в диаметре, то на нее накладывают стерильный пластырь. Если диаметр больше, то накладывают шов.

Очаг поражения и примыкающий к нему здоровый участок иссекают специальным инструментом. Метод используется при подозрениях на злокачественные опухоли. Для исследования выбирают биоптат с выраженными изменениями (обесцвеченная кожа, на которой плохо заживают раны). Раневую поверхность обрабатывают стерильной салфеткой для предотвращения заражения и кровотечения. Ранку ушивают, если дефект большой, то для его закрытия используется кожный трансплантат.

На результаты исследования влияют такие факторы, как:

Забор образца без патологических изменений или с минимальными отклонениями.
Использование нестерильного контейнера или неправильная фиксация материала и его повреждение.

Основная цель вышеописанных методов – это дифференциальная диагностика доброкачественных и злокачественных поражений, выявление хронической грибковой и бактериальной инфекции. Полученный материал сразу отправляют в лабораторию.

Исследование кожного покрова головы представляет собой забор ткани для гистологического анализа. С помощью специальной иглы врач вырезает кусочек в 2-4 мм, который после специальной обработки изучается под микроскопом. Всю процедуру проводят под местным обезболивающим, поэтому пациент не испытывает дискомфорт или боль.

На раневую поверхность накладывают швы, которые снимают через 3-7 дней. При этом не рекомендуется мыть голову первые два дня для предотвращения инфицирования или нагноения ранки. Подобное иссечение считается самым достоверным методом в постановке диагноза кожных и дерматологических заболеваний.

Операцию проводят для уточнения диагноза при появлении на голове сыпи или при рубцовом облысении. Анализ позволяет выявить инфекционные, грибковые, вирусные или бактериальные поражения, а также различные аутоиммунные болезни. Процедуру проводят при ранах и ожогах разной степени.

[6], [7]

При подозрении на злокачественные заболевания или другие поражений кожного покрова лица, проводится операция, в процессе которой на исследование берется небольшая часть ткани. Перед иссечением необходимо прекратить принимать медикаменты, способствующие кровотечению, противовоспалительные лекарства и антикоагулянты.

Процедуру могут назначить при подозрениях на рак, псориаз, амилоидоз, узелковый периартериит, красную волчанку и другие заболевания. Исследуемый участок тщательно промывают и обрабатывают спиртовым раствором йода или эфира.

Как правило, процедуру проводят методом тонкого среза, то есть с помощью скальпеля снимается тонкий слой кожи. На рану накладывают стерильный пластырь для самостоятельного заживления.
В некоторых случаях применяют пункционную биопсию с помощью специальной иглы. Данный метод позволяет взять более глубокие слои кожи и подкожной клетчатки. На ранку накладывают косметический шов.

Полученный материал изучают под микроскопом, чтобы выявить различия в клетках (цитология) и тканях (гистология). Чтобы избежать болезненных ощущений операцию проводят под местной анестезией. Как правило, это поверхностное обезболивание, то есть распыление препарата и заморозка участка, через который пройдет игла. Анализ может стать причиной ряда осложнений: воспаление, келоидные рубцы. Результатов приходится ждать 1-6 недель.

[8], [9], [10], [11]

При подозрениях на псориаз пациента ждет множество анализов и диагностических процедур, в том числе и иссечение кожи для гистологии и цитологии. Как правило, выявить псориаз не составляет труда, так как о недуге свидетельствует характерный вид тканей. Если болезнь имеет активное, прогрессирующее или тяжелое течение, то в стандартных анализах крови выявляют эндокринные и биохимические нарушения.

В этом случае пациенту назначают диагностическое иссечение для исключения других заболеваний и гистологическое подтверждение псориаза. В процессе изучения пораженных тканей обнаруживаются скопления телец Реете, то есть гистологическая незрелость и утолщение слоя кератиноцитов, повышенная пролиферации и ускоренный ангиогенез в тканях под бляшками.

Еще один характерный признак недуга, который проявляется во время анализа – это точечные кровотечения под кожей с бляшкой при попытках ее соскабливания. Это связано с патологической повышенной проницаемостью, легкостью сосудов в местах поражения и ускоренным ангиогенезом.

Исследование новообразований на коже осуществляется с помощью операции, в ходе которой ткани берут для исследования. Подкожные и кожные опухоли встречаются часто, поэтому требуют тщательного осмотра и ранней диагностики. Существует несколько способов взятия образца опухоли. Врач выбирает наиболее подходящий, учитывая ряд факторов, то есть локализацию, возможный диагноз и косметический эффект. Все полученные образцы отправляют не только на цитологию и гистологию, но и на морфологическое исследование.

С помощью скальпеля делается тонкий срез эпидермиса и верхнего слоя дермы. При такой процедуре рана не требует наложения швов. С помощью данного метода можно полностью удалить небольшую опухоль, а из крупного образца взять материал для исследования.
Для пункционной биопсии применяют специальные иглы диаметром 1-6мм. В процессе операции получают столбик подлежащих тканей. Метод отлично подходит для исследования крупных опухолей. С его помощью можно полностью удалить опухоль, если ее диаметр меньше диаметра иглы. Рану зашивают. Методика не используется для диагностики или удаления новообразований, в жировой ткани.
Инцизионное исследование представляет собой иссечение части опухоли с захватом эпидермиса, дермы и подкожной клетчатки. Это позволяет провести гистологический анализ. Рану ушивают.
Тотальное исследование – это полное удаление новообразования и гистология. Для анализа берут все слои кожи. Если есть подозрения на злокачественное перерождение, то край иссеченной ткани помечают, прошив нитью. В дальнейшем это облегчает повторную операцию, так как врач сможет распознать злокачественную область.

Перед операцией раневую поверхность обрабатывают анестетиком. Для этих целей используют 1% лидокаин или смесь адреналина с лидокаином.

[12], [13], [14], [15]

Гистологическое исследование – один из главных методов выявления кожных заболевание. Гистологию проводят методом забора ткани с пораженного участка. Это позволяет дифференцировать различные поражения, что существенно упрощает процесс определения недуга. Основное правило взятия биоптата – это выбор места для его забора. Материал должен быть с подкожной жировой клетчаткой.

Биоптат обрабатывают раствором формалина, который может сохранять ткани в течение месяцев, не нанося ему ущербу. Как правило, используется эксцизионное иссечение. Материал берут с помощью специальной иглы или скальпеля. Полученные ткани исследуют с помощью световой, электронной микроскопии или иммунофлюоресцентного окрашивания.

После забора кожи для исследования за раневой поверхностью требуется специальный уход. В зависимости от размеров раны возможно использование стерильной повязки в течение нескольких дней. В некоторых случаях сразу после процедуры или на следующий день, место, откуда брали биоптат, кровоточит. В этом случае необходимо обратиться за медицинской помощью.

После пункционной и эксцизионной биопсии на теле остается небольшой шрам. Если он находится на шее, спине или груди, то становится причиной дискомфорта, в том числе и косметического. Заживление занимает несколько недель, но рана затягивается 1-2 месяца. Если для исследования брались ткани с верхних или нижних конечностей, то они заживают намного медленнее, чем на других участках.

Пока кожа заживает, за ней необходимо правильно ухаживать:

Перед тем как прикоснуться к ране, нужно тщательно вымыть руки с мылом.
Поверхность нужно обработать антисептиком и закрыть стерильной повязкой или лейкопластырем.
Ранку должна быть сухой и чистой.
Не погружайте пораженный участок в воду, пока ткани хорошо не зажили.
Продолжайте уход до полного восстановления тканей или до тех пор, пока не снимут швы.

Если после операции появились признаки инфекции, то есть лихорадка и озноб, отек, кровотечение, выделения или усиление боли, то стоит обратиться за медицинской помощью. В этом случае пациенту назначают обезболивающие и противовоспалительные препараты. При наложении швов они сохраняются 3-14 дней, в зависимости от места локализации раны.

[16], [17], [18], [19], [20]

У многих пациентов, которым назначили диагностическое иссечение кожных покровов, возникает один и тот же вопрос: можно ли мыться и мочить пораженный участок сразу после процедуры.

Если для исследования применяли иссечение верхнего слоя эпидермиса и дермы и пациент не ощущает сильной боли, то рану можно мочить. После водных процедур нужно нанести антисептик для предотвращения инфицирования.
При пункционном заборе на рану накладывают швы, поэтому пораженный участок не рекомендуется мочить 1-2 дня.
Кожу нельзя растягивать, так как это может стать причиной кровотечения, увеличения раны, что в дальнейшем приведет к появлению шрама.

Полное заживление происходит в течение 1-2 недель.

[21], [22], [23], [24]

Если для исследования биоптат был взят с лица, то необходимо знать, как ускорить заживление. Для лечения раны ее нужно обработать антисептиком, к примеру, зеленкой. В период восстановления лучше пару дней провести дома, для того чтобы не ощущать дискомфорта от постоянных взглядов окружающих. Конечно, если речь идет о большой раневой поверхности и проблема имеет эстетический характер.

После биопсии кожи для ухода за поврежденной поверхностью используются ранозаживляющие мази (Пантенол, Актовегин, Бепантен) или крема. Подобные медикаменты ускоряют заживление и дают хороший косметический эффект. Местные средства оказывают противовоспалительное и бактерицидное действие, снимают покраснений и раздражение.

Если есть показания к биопсии, то перед ее проведением у пациента берут согласие и предупреждают о возможных рисках и осложнениях. Задача врача объяснить, что исследование представляет собой изучение кусочка плоти на различные инфекции. Пациенту объясняют суть метода и отвечают на все интересующие вопросы. Процедура не требует специальной подготовки или соблюдения диеты.

Поскольку может применяться местная анестезия для предупреждения болезненных ощущений, то необходимо выяснить есть ли у пациента непереносимость анестетика.

Перед диагностикой пациент должен предупредить врача о следующих случаях:

Прием медицинских препаратов, особенно противовоспалительных, так как они влияют на результаты исследования.
Наличие аллергии на определенные препараты.
Проблемы с кровотечением и прием медикаментов для разжижения крови (Варфарин, Аспирин, Коумадин).
Беременность.

Что касается рисков и осложнений, то это – кровотечения, инфицирование, болезненные ощущения, длительное заживление раны. После этого пациенту необходимо подписать форму согласия.

Стоимость диагностического иссечения кожи зависит от применяемого гистологического исследования. Процедура затратная и обходится в 300-5000 грн., в зависимости от места забора материала и от диагностики предполагаемого заболевания.

Панч исследование кожных покровов туловища и конечностей – от 600 грн.
Забор материала с лица, шеи, кистей, стоп или гениталий – от 700 грн.
Эксцизионное хирургическое иссечение – от 800 грн.
Патологическое исследование биоптата – от 500 грн.

Забор образцов осуществляется в специализированных клиниках. Изучение тканей проводят как в украинских лабораториях, так и отправляют в диагностические центры за пределами страны. Результаты анализа предоставляют в течение 1-6 недель.

[25], [26], [27], [28]

Медицинская сестра накануне исследования должна предупредить больного о предстоящем заборе крови и разъяснить, что кровь берут натощак, до приёма лекарственных средств, а на ужин не следует употреблять жирную пищу.

При заборе крови из вены время наложения жгута должно быть по возможности минимальным, так как длительный стаз крови повышает содержание общего белка и его фракций, кальция, калия и других компонентов.

В зависимости от цели исследования забор крови для лабораторного анализа осуществляют из пальца (капиллярная кровь) и из вены (венозная кровь).

Кровь из пальца берёт лаборант. Этот анализ необходим для количественного и качественного изучения форменных элементов крови (эритроцитов, лейкоцитов, тромбоцитов), определения количества в крови гемоглобина и скорости оседания эритроцитов (СОЭ). Такой анализ называют общим анализом крови. Кроме того, в ряде

случаев из пальца берут кровь для определения содержания в крови глюкозы, а также свёртываемости крови и времени кровотечения.

В настоящее время созданы аппараты (например, «Холестех», США), в которых на основе восковой матрицы осуществляется возможность из капли крови, взятой из пальца, определять содержание в крови общего холестерина, холестерина липопротеидов высокой, низкой и очень низкой плотности, триглицеридов и глюкозы, рассчитывать индекс атерогенности и риск развития ИБС.

Кровь из вены берёт процедурная медицинская сестра посредством пункции в большинстве случаев локтевой вены; кровь смешивается в пробирке с противосвёртывающим веществом (гепарин, натрия цитрат). Забор крови из вены осуществляют с целью количественного изучения биохимических показателей крови (так называемых печёночных проб, ревматологических проб, содержания глюкозы, фибриногена, мочевины, креатинина), обнаружения возбудителей инфекции (взятие крови на гемокультуру и определение чувствительности к антибиотикам) и антител к ВИЧ. Объём забираемой из вены крови зависит от количества определяемых компонентов — обычно из расчёта 1-2 мл на каждый вид анализа.

Взятие крови на исследование из вены

Противопоказания к процедуре определяет врач. К ним относят крайне тяжёлое состояние пациента, спавшиеся вены, судороги, возбуждённое состояние пациента.

Весь использованный во время манипуляции материал необходимо продезинфицировать.

Резиновый жгут и клеёнчатый валик протирают дважды ветошью, смоченной дезинфицирующим раствором (например, 3% раствором хлорамина Б), и промывают проточной водой. Использованный ватный шарик с кровью обязательно следует забрать у пациента и, прежде чем поместить его в отходы, замочить в дезинфицирующем растворе не менее чем на 60 мин. Дезинфицирующим раствором необходимо обработать также и рабочий стол.

• одноразовые (стерильные) шприцы с иглами;

• стерильный лоток с ватными шариками и пинцетом;

• резиновый жгут, резиновый валик и салфетка;

• 70% раствор спирта, чистые пробирки с пробочками в штативе;

• спецодежда (халат, маска, стерильные перчатки);

• лоток для использованного материала;

• тонометр, фонендоскоп, противошоковый набор лекарственных средств.

Порядок выполнения процедуры:

1. Подготовить пациента — помочь ему занять удобное положение сидя или лёжа.

2. Подготовиться к процедуре: пронумеровать пробирку и направление на анализ (одина-

ковым порядковым номером), вымыть и высушить руки, надеть спецодежду, обработать руки ватными шариками, смоченными 70% раствором спирта, надеть перчатки.

3. Подложить под локоть пациента клеёнчатый валик для максимального разгибания локтевого сустава.

4. Освободить от одежды руку или поднять рукав рубашки до средней трети плеча таким

образом, чтобы был обеспечен свободный доступ к области локтевого сгиба.

5. Наложить резиновый жгут в области средней трети плеча выше локтевого сгиба на 10 см и затянуть жгут, чтобы петля жгута была направлена вниз, а свободные его концы —

вверх (чтобы концы жгута во время венепункции не попали на обработанное спиртом поле).

6. Обработать одетые в перчатки руки 70% раствором спирта.

7. Предложить пациенту «поработать кулаком» — несколько раз сжать и разжать кулак для

8. Попросить пациента сжать кулак и не разжимать до тех пор, пока медсестра не разре-

шит; при этом дважды обработать кожу в области локтевого сгиба ватными шариками, смоченными 70% раствором спирта, в одном направлении — сверху вниз, сначала широко (размер инъекционного поля составляет 4×8 см), затем — непосредственно место пункции.

9. Найти наиболее наполненную вену; затем кончиками пальцев левой руки оттянуть кожу

локтевого сгиба в сторону предплечья и фиксировать вену.

10. В правую руку взять приготовленный для пункции шприц с иглой.

11. Провести венепункцию: держа иглу срезом вверх под углом 45°, ввести иглу под кожу;

затем, уменьшив угол наклона и держа иглу почти параллельно кожной поверхности, продвинуть иглу немного вдоль вены и ввести её на треть её длины в вену. При проколе вены возникает ощущение «провала» иглы в пустоту.

12. Убедиться, что игла находится в вене, слегка потянув поршень иглы на себя; при этом

в шприце должна появиться кровь.

13. Не снимая жгут, продолжить тянуть поршень шприца на себя для набора необходимого

14. Развязать жгут и предложить больному разжать кулак.

15. Прижать ватный шарик, смоченный в 70% растворе спирта, к месту инъекции и быстро извлечь иглу.

В ряде случаев во избежание повреждения форменных элементов крови (например, при исследовании агрегационной функции тромбоцитов) кровь нельзя набирать шприцем. В такой ситуации следует набирать кровь «самотёком» — подставить под иглу (без шприца) пробирку и подождать, пока она заполнится необходимым количеством крови.

16. Предложить больному согнуть руку в локтевом сгибе вместе с ватным шариком и оставить так на 3-5 мин для остановки кровотечения.

17. Снять иглу со шприца, медленно выпустить кровь в пробирку по её стенке (быстрое поступление крови в пробирку может привести к её вспениванию и, следовательно, гемолизу крови в пробирке) и закрыть пробирку пробочкой.

18. Сложить использованные материалы в специально приготовленный лоток, снять перчатки.

19. Спросить у пациента о его самочувствии, помочь ему встать или удобно лечь.

20. Оформить направление в лабораторию, поместить штатив с пробирками в ёмкость для

транспортировки биологических жидкостей (бикс) и отправить в лабораторию для исследования.

NB!При подозрении на гепатит или ВИЧ-инфекцию у больного ёмкость с кровью необходимо дополнительно парафинировать или закрыть лейкопластырем и поместить в герметичный контейнер.

Кровь для клинического анализа берут из IV пальца левой руки. Если это по каким-либо причинам сделать невозможно, то кровь можно получить из любого другого пальца. Наиболее удобным местом для укола является мякоть пальца слева от срединной линии, на некотором расстоянии от ногтя (у маленьких детей местом укола служит мочка уха, большой палец ноги или пятка).

· Подготовить на манипуляционном столе набор для забора крови из

пальца, проверив целостность упаковок и дату стерилизации:

· индивидуальное стерильное предметное часовое стекло или пробирку одноразового использования, стерильное предметное стекло для приготовления мазка крови, резиновый баллончик, перчатки.

· на рабочем столе оформить сопроводительные документы;

· помочь пациенту найти удобное положение;

· разъяснить пациенту суть предстоящей процедуры, создавая

атмосферу доверия, предоставляя возможность задать вопросы;

· обработать руки спиртовым антисептиком;

· Левой рукой лаборант захватывает IV палец левой руки обследуемого, слегка сдавливая при этом мякоть пальца в области предполагаемого укола. В правую руку лаборант берет иглу для одноразового пользования и располагает ее строго перпендикулярно относительно места предполагаемого укола. обработать подушечку пальца стерильным ватным шариком, смоченным спиртовым антисептиком;

· сбросить шарик в емкость для отходов «Класса. Б»;

· вскрыть одноразовый скарификатор и сделать прокол на подушечке

безымянного пальца. Укол лучше производить сбоку, где более густая

капиллярная сеть, на глубину 2-3 мм в зависимости от толщины кожи;

· использованный скарификатор сбросить в контейнер «Для колющих

· сухим стерильным шариком убрать каплю крови с пальца

пациента, шарик сбросить в емкость для отходов «Класса Б»;

· произвести забор крови из пальца с использованием стерильных

капилляров или одноразовых пробирок;

Взятие крови для гематологических исследований может осуществляться 3 способами:

I. После прокола пальца несколько капель крови (не менее 3-4) спускают на индивидуальное предметное (часовое) стекло или гнездо пластикового планшета, перемешивают и используют для работы.

II. Кровь набирают индивидуальным, стерильным капилляром Панченкова, предварительно смоченным цитратом натрия.

III. После прокола кожи пальца, 6-8 капель крови спускают в пластиковую пробирку с антикоагулянтом. К» ЭДТА или К3ЭДТА (трилон Б) из расчета 1,5-2,2 мг на 1 мл крови, либо в специальные пластиковые пробирки одноразового пользования, обработанных. Сразу же после взятия пробу необходимо тщательно перемешать, перевернув пробирку крышкой вниз не менее 10 раз.

В случае использования 1 или 2 способа взятия крови в лаборатории заранее готовятся следующие пробирки с:

1. 4 мл 0,9% изотонического раствора натрия хлорида для подсчета числа эритроцитов,

2. 5 мл трансформирующего раствора для определения гемоглобина,

3. 0,4 мл 3% раствора уксусной кислоты для подсчета числа лейкоцитов.

4. 5% раствором трехзамещенного цитрата натрия, набранного в капилляр Панченкова до метки 25 и слитого в пробирку для определения СОЭ.

Сразу после взятия крови в 1, 2 и 3-ю пробирки добавляют по 20 мкл крови и несколько раз промывают пипетку в верхнем слое жидкости. Исследование крови начинают с разведения для эритроцитов, так как дальнейшая работа по определению количества лейкоцитов и содержания гемоглобина связана с использованием реактивов, лидирующих эритроциты. Для определения СОЭ в капилляр, промытый цитратом натрия, набирают кровь до метки 0 (100 делений) и выдувают ее в пробирку с раствором цитрата натрия (соотношение крови и реактива — 4:1), пробирку встряхивают.

Для исследования лейкоцитарной формулы, морфологии эритроцитов, лейкоцитов, тромбоцитов готовят мазки крови: вытирают место укола сухим шариком ваты и наносят каплю крови на сухое обезжиренное предметное стекло, затем быстро готовят тонкие мазки с помощью шлифованного стекла

Внимание! Кровь забирается только самотеком!

Не нашли то, что искали? Воспользуйтесь поиском:

Лучшие изречения: Для студента самое главное не сдать экзамен, а вовремя вспомнить про него. 9861 — | 7421 — или читать все.

195.133.146.119 © studopedia.ru Не является автором материалов, которые размещены. Но предоставляет возможность бесплатного использования. Есть нарушение авторского права? Напишите нам | Обратная связь.

Отключите adBlock!
и обновите страницу (F5)
очень нужно

) Не встряхивайте пробирку резко, это может вызвать пенообразование и гемолиз!
б) После венепункции верхняя часть крышки может быть испачкана остатками крови. Примите защитные меры для предотвращения контакта с этой кровью во время работы с пробирками. Любой держатель, контаминированый кровью, представляет опасность и должен быть утилизирован немедленно.

Преимущества вакуумных систем для забора крови для медперсонала:

1. Полная гарантия защиты от профессионального инфицирования.

2. Невозможность применения для инъекций и для повторного применения наркоманами.

3. Экономия времени персонала ЛПУ на процесс забора крови.

4. Единственный способ полностью герметичной транспортировки проб крови.

5. Возможность забора крови у больных с тонкими и склерозированными венами.

6. Легкое прокалывание крышки без риска травмирования вены.

7. Отсутствие крови на внутренней поверхности крышки благодаря силиконовому покрытию.

8. Цветовая кодировка позволяет легко различать вакуумные пробирки для различных типов анализов.

9. Малый наружный диаметр игл не травмирует вены.

10. Простота конструкции обеспечивает ее надежность.

11. Возможность забора крови с использованием любых катетеров.

. Для получения максимально чистой сыворотки рекомендуется соблюдение трех условий:
1. После забора крови в пробирку в соответствии с инструкцией необходимо осторожно однократно перевернуть пробирку для более полного контакта крови с активатором свертывания;
2. Дождаться завершения процесса свертывания крови в течение 20-30 минут при комнатной температуре и вертикальном положении пробирки;Для отделения сыворотки от клеток крови в пробе крови ,взятой у пациента, вакуумную пробирку следует оставить при комнатной температуре по меньшей мере 30 мин.

Всем нам хорошо известны современные требования к взятию крови из вены. Выполняя эти требования, мы часто сталкиваемся с целым рядом сложностей: это и тромбирование крови в игле, и гемолиз, вызванный двукратным прохождением крови через иглу. При необходимости заполнить кровью несколько пробирок увеличивается длительность взятия крови. Если планируется определение факторов свертывания, очень важно точно соблюдать соотношение кровь-антикоагулянт, что не всегда удается.
Различные неприятности случаются также и при доставке пробирок с кровью в лабораторию. Как часто мы сталкиваемся с тем, что пробирка разбилась, кровь разлилась или часть крови впиталась в ватный тампон, которым закрыта пробирка. Кроме того, хотя вы и работаете в перчатках, кровь пациента может попасть вам на руки.
Эти и многие другие проблемы легко решаются при использовании вакуумных систем для взятия крови

Почему кровь не поступает в пробирку? Возможная причина Способ решения проблемы Конец иглы вплотную прилегает к стенке вены Аккуратно поверните иглу, не вынимая ее из вены Игла проколола вену насквозь Аккуратно потяните иглу вместе с иглодержателем, не вынимая ее из вены Игла не полностью вошла в вену Аккуратно надавите на иглу вместе с иглодержателем, не вынимая ее из вены Жгут затянут слишком туго или намного выше места взятия крови Снять жгут Пробирка уже использовалась либо была предварительно открыта, либо пробка пробирки была проколота до того, как игла вошла в вену Заменить пробирку на новую Почему поступление крови в пробирку быстро прекращается, не наполнив пробирку? Пробирка была слишком быстро снята с иглы и вынута из держателя Вставьте пробирку обратно на иглу и оставьте до тех пор, пока в пробирке полностью не компенсируется вакуум (после этого ток крови прекратится) Всасывание крови в пробирку происходит слишком быстро для вены данного пациента (коллапс вены) Вытащите пробирку из держателя на секунду, а затем снова ее вставьте Игла повредила вену в процессе венопункции или игла прошла вену насквозь Повторите венопункцию в другом месте, где нет гематомы Гемолиз крови в пробирке Слишком сильное сдавление вены (больше 1 мин) Точный контроль времени наложения жгута (не более 1 мин) Перенос крови в пробирку с помощью шприца Использовать специальные двусторонние иглы для вакуумных пробирок Слишком интенсивное перемешивание образца Аккуратно перевернуть пробирку 6-8 раз Пробирка неадекватно заполнена Контролировать, чтобы пробирка была заполнена приблизительн

Техника взятия крови. В зависимости от методов взятия и анализа крови необходимо подготовить: инструментарии — лезвие от безопасной бритвы и иглы иньекционные или для взятия крови, предварительно простерилизованные; смесители (меланжеры) с нанесенными на них десятью делениями, из которых пятое отмечено цифрой 0,5, а десятое — 1. За ампулообразным расширением одного из них нанесены цифры 101 для подсчета эритроцитов, а на другой — цифры 11 для подсчета лейкоцитов. Часто используют чистые, сухие и этикетированные пробирки Флоринского с 100-гнездным штативом; капилляр от гемометра Сали, гемометр Сали; градуированные пипетки на 2 и 20 мл; растворы для подсчета эритроцитов (1%-ный водный раствор натрия хлора) и лейкоцитов (3—5%-ный раствор ледяной уксусной кислоты, подкрашенный 1%-ным раствором метиленовой сипи, или одну кашпо насыщенного раствора метиленвиолета на 100 мл 3%-ной уксусной кислоты); 0,1 и. раствор НС1; дистиллированную воду, вагу, спирт и эфир (поровну) или настойку йода, противосвертывающие вещества — антикоагулянты; шлифованное и предметные стекла для приготовления мазков крови, чистую бумагу и простой карандаш для этикетирования мазков, пробирок или смесителей.
Взятие проб крови. Для морфологического анализа требуется очень небольшое количество крови. Поэтому у лошадей, мелкого и крупного рогатого скота и верблюдов кровь берут из какого-нибудь сосуда наружной или внутренней поверхности уха, а при необходимости и из яремной вены. У свиней кровь берут из уха шли хвоста (отрезая кончик), у плотоядных — из уха или Y. Saphena, кроликов и морских свинок — из сосудов уха, у верблюдов — путем прокола кожи па горбе, у крыс и мышей из хвоста, отрезая его копчик, у кур — путем прокола кожи шит гребня сережек (отрезая кусочек) и из вен крыла, у уток и гусей — из мякоти ступни ног.
Кровь из кровеносных сосудов наружной или внутренней поверхности уха животного берут путем укола инъекционной иглой пли разреза скальпелем (можно использовать лезвие от безопасной бритвы). Предварительно место укола или надреза очищают от грязи (если брать из наружной поверхности уха, то выстригают), протирают спирт-эфиром и просушивают сухой ватой. Эфир высушивает кожу и вызывает реактивное расширение сосудов после их первоначального сужения.
Для удобства работы левой рукой берут за верхний край правой ушной раковины и приоткрывают внутреннюю поверхность, а правой рукой протирают ватным тампоном, делают надрез вены и набирают кровь. При взятии проб крови из наружной поверхности уха большим и указательным пальцами левой руки придерживают копчик ушной раковины, а правой рукой делают укол кровеносного сосуда. При этом остальные три пальца левой руки поддерживают ухо с противоположной стороны, создавая твердую основу для укола.
Укол или надрез делают умеренной глубины, чтобы нс проколоть противоположную стенку сосуда. Если ранка небольшая, то кровь выделяется самопроизвольно небольшими каплями. Если же кровь вытекает слабо, ухо похлопать по противоположной стороне. При этом необходимо избегать разминания сосудов, грубого надавливания или протирания ватным тампоном, длительного ластов крови. В противном случае в вытекающую кровь попадает тканевая жидкость и состав крови может существенно измениться. Первые капли крови удаляют ватным тампоном, а последующие пробы берут для гематологических исследований.
В холодное время после укола или надреза кровь из сосудов выступает не сразу из-за их сужения. Если же уши животного теплые, сосуды хорошо заметны, кровенаполнены, капля крови выступает тут же после укола или надреза. Если кровь у животного из уха берут многократно, то следует уши чередовать или делать надрез сосуда сначала у кончика уха, а затем все ближе к его основанию. Это необходимо для устранения влияния местной реакции па показания крови. Фиксировать животное нужно все время одним и тем же методом, так как различные методы фиксации влияют па состав крови.
При массовых исследованиях животных кровь берут из яремной вены в пробирки с антикоагулянтами. На месте прокола выстригают шерсть и кожу дезинфицируют спиртом, 10%-ной настойкой йода или 0,5%-ным раствором карболовой кислоты. Большим пальцем левой руки слева у основания шеи нажимают па вену или накладывают резиновый жгут, что задерживает отток крови, и вена набухает в виде толстого шпура. Правой рукой вводят кровопускательную иглу, предварительно простерилизованную (путем кипячения в течение 5 мин), в вену под острым углом по направлению к голове, продвигая в полость сосуда приблизительно на 1 см. Если кровь не вытекает, рекомендуется иглу повернуть вокруг продольной оси и слегка продвинуть вперед пли назад.
Ecли кровь вытекала и вскоре после этого остановилась, значит, игла приняла неудобное положение или получился тромб, или прободены обе стенки вены. В этих случаях следует вынуть иглу и повторить манипуляцию другой иглой в другом месте вены.
Струю крови направляют на стенку пробирки, наполняя ее в зависимости от количества внесенного антикоагулянта и величины пробирки до 2/3 вместимости. После этого пробирку закрывают резиновой пробкой, тщательно перемешивают с антикоагулянтом и наклеивают этикетку. Очень важно не допустить свертывания крови. При использовании кондуктометрических счетчиков нельзя, чтобы в стабилизированную кровь попадали механические загрязнения волокон. Они могут вызвать частичную или полную закупорку микроотверстия, а это приводит к значительным погрешностям или делает невозможным подсчет. Стабилизированную кровь в термоизолирующей и амортизирующей упаковке необходимо немедленно транспортировать в ветеринарную лабораторию.
При взятии проб крови без антикоагулянтов приготовление мазков и зарядку смесителей или пробирок Флоринского делают быстрее, до свертывания или оседания па дно пробирки форменных элементов крови.
Стабилизация крови. Для гематологических исследовании желательно пользоваться свежеполученной кровью. Но в ветеринарной практике при массовых обследованиях и необходимости транспортировки крови па далекие расстояния приходится часто производить морфологические исследования крови через продолжительное время после ее взятия у животных. В этих случаях возникает необходимость стабилизировать кровь путем добавления специальных веществ-антикоагулянтов. К ним относятся нейтральные соли (сернокислый магний и сернокислый натрий) или вещества, способствующие инактивации в крови солей кальция — щавелевокислый натрий (оксалат натрия), лимоннокислый натрий (цитрат натрия). К антикоагулянтам относятся также вещества животного происхождения: гирудин, гепарин и др.
В последнее время в качестве антикоагулянта используют трилон Б (комплексоп-III, желатон, двунатриевая соль ЭДТА — этилендиаминтетрауксусная кислота).
В ветеринарной практике при камерном способе подсчета форменных элементов крови чаще всего применяют щавелевокислый или лимоннокислый натрий. При их использовании необходимо соблюдать дозировку указанных антикоагулянтов, так как с увеличением дозы этих стабилизаторов возникают качественные изменения главным образом со стороны цитоплазмы лейкоцитов, а это затрудняет не только окраску мазков крови, но и дифференциацию лейкоцитов, поэтому мазки желательно делать из нативной крови.
Наименьшие дозы антикоагулянтов, надежно стабилизирующие кровь животных и оказывающие незначительное отрицательное влияние на ее клеточный состав, следующие: лимоннокислого натрия 0,004 г или щавелевокислого натрия 0,002 г на 1 мл крови. В практических условиях, в частности в хозяйствах, рекомендуется использовать 3%-ный водный раствор оксалата натрия или 6%-ный раствор цитрата натрия. Эти растворы можно хранить и использовать в течение 6—7 сут без изменения свойств антикоагулянтов.
В пробирки (желательно типа Флоринского) глазной пипеткой вносят 3 капли 3%-пого раствора оксалата натрия (из расчета одна капля на 1 мл крови) или цитрата натрия. Для проведения морфологических исследований вполне достаточно 3 мл крови (из этого расчета и приведены дозировки указанных антикоагулянтов). Затем пробирки с антикоагулянтом устанавливают в наклонном положении в сушильный шкаф и жидкость выпаривают при температуре не более 100 °С.
При подсчете форменных элементов крови с помощью электронных счетчиков частиц используют трилон Б (двунатриевая соль ЭДТА — этилендиаминтетрауксусная кислота). Готовят 10%-ный водный раствор (на дистиллированной воде) и подогревают до 80 °С до полного растворения компонентов. Подогретый раствор фильтруют через микропористый стеклянный фильтр № 3 пли 4 или через четыре слоя фильтровальной бумаги. На 5 мл крови берут две капли приготовленного раствора филона Б. Кровь, стабилизированная филоном Б, пригодна для подсчета лейкоцитов с помощью электронного счетчика частиц в течение 48 ч, а другими антикоагулянтами — не более 1 сут с обязательным приготовлением мазков в первые 6 ч. Хорошие результаты можно получить при использовании антикоагулянта следующего состава: щавелевокислый аммоний (оксалат аммония) — 3 г; щавелевокислый натрий (оксалат натрия) — 2 г; вода дистиллированная — до 250 мл.
Указанный стабилизатор вносят мерной пипеткой (на 1 мл) в пробирки из расчета 0,2 мл на 1 мл крови (на 3 мл — 0,6 мл раствора). Затем пробирки помещают в сушильный шкаф при температуре не более 100 °C до полного испарения воды.
Приготовленные таким образом пробирки с указанными антикоагулянтами можно хранить при комнатной температуре в течение 10—20 дней. При несоответствии количества взятой крови с дозой внесенного в нее солевого антикоагулянта наблюдаются различные изменения в составе крови: если крови взято больше, чем нужно по расчету, то может произойти ее свертывание, если меньше — отмечается сморщивание эритроцитов (видны под иммерсионной системой объектива микроскопа в виде звездчатых клеток), а иногда и гемолиз. Кроме того, может быть понижение устойчивости клеток к механическим воздействиям при приготовлении мазков из стабилизированной крови. Это объясняется тем, что избыточное содержание солевых антикоагулянтов в плазме кропи повышает осмотическое давление, приводящее к сморщиванию эритроцитов.
Гепарин готовится в 1%-ном растворе на дистиллированной воде. Применяется из расчета две капли па 5 мл крови. После внесения пипеткой 1%-ного раствора гепарина в указанных количествах пробирки помещают в наклонном положении под углом 5—10° в сушильный шкаф и выпаривают жидкость при температуре не более 80—90 °С. Подготовленные таким способом пробирки с гепарином могут храниться длительное время в защищенном от света месте без изменения свойств антикоагулянта.
В качестве антикоагулянта можно также применять стабилизатор следующего состава (при использовании счетной камеры): трилон Б — 50 мг; 40%-ный формальдегид — 50 мл; дистиллированная вода — до 500 мл. Формалин, введенный в этот стабилизатор, уплотняет оболочку клеток, предохраняя их от разрушения при продолжительном хранении крови. Для стабилизации в пробирку с помощью пипетки вносят одну-две капли этого раствора на 3—4 мл крови. В подготовленные пробирки с указанными антикоагулянтами берут кровь, закрывают их резиновыми пробками и осторожно, не вспенивая содержимое, перемешивают для лучшего растворения антикоагулянта и его смешивания с кровью, равномерного распределения форменных элементов.
Пробирки с антикоагулянтом при хранении их в холодильнике (при -4 °С) пригодны для исследования в течение 10 дней. Холодильное оборудование должно постоянно поддерживать данную температуру. Kpoвь, стабилизированная трилоном Б, пригодна для подсчета лейкоцитов с помощью электронного счетчика частиц в течение 48 ч, а другими антикоагулянтами— не более 1 сут с обязательным приготовлением мазков в первые 6 ч.
При взятии крови нельзя допускать попадания в пробирки инородных частиц, которые могут вызвать погрешности при подсчете форменных элементов.
Работу с нитрированной кровью следует производить после взятая в более короткие сроки, так как в крови, предохраненной от свертывания, происходит ряд изменений, отражающихся на результате исследований,
В последующем при использовании крови, т. е. при приготовлении мазков и зарядке меланжеров или пробирок Флоринского, пробирку с кровью перевертывают несколько раз для лучшего и равномерного распределения форменных элементов в крови.
Плазма крови — жидкая кровь без содержания форменных элементов. Плазму можно получил, путем замедления или предотвращения свертывания крови при помощи антикоагулянтов, собирания крови в парафинированный сосуд или сильного ее охлаждения в момент взятия с последующим хранением на холоде. Полученная таким способом кровь при долгом стоянии или центрифугировании расслаивается па плазму (верхняя часть сосуда) и форменные элементы (внизу).
Дефибринированная кровь — выпадение фибрина из плазмы приводит к дефибринированию крови. Выпущенная из сосу да кровь через 5—15 мин свертывается, выделяя фибрин. В результате дефибринирования из плазмы получается сыворотка. Для полного дефибринирования свежеполученную кровь энергично взбалтывают во флаконах со стеклянными бусами в течение 15 мни с последующей фильтрацией ее через двойной слон марли. Фибрин остается на фильтре, а фильтрат при долгом стоянии или после центрифугирования в течение 5 мин при 3000 об/мин расслаивается на сыворотку и осадок форменных элементов крови.
Для получения суспензии эритроцитов из флакона отсасывают сыворотку, а осадок промывают повторно (3—4 раза) физиологическим 0,85%-ным раствором хлористого натрия с применением центрифугирования. Сущность процесса свертывания заключается в том, что при соприкосновении крови с инородными телами (кожа, шерсть, режущие инструменты) форменные элементы се выделяют фермент тромбокиназу (в циркулирующей крови ее нет), который в присутствии ионизирующих солей кальция переводит протромбин или тромбоген плазмы крови в тромбин, обладающий свойством превращать существующий в крови фибриноген в нерастворимое глобулиновое тело — фибрин.
Сыворотка крови — жидкая часть крови, образующаяся после ее свертывания и удаления. Для получения сыворотки кровь из яремной вены собирают в сосуд, направляя струю по его стенке, предотвращая при этом ее взбалтывание и вспенивание. Для свертывания крови сосуд кладут на 15—20 мин в теплое место (можно в термостат). По истечении этого срока для лучшего выделения сыворотки топкой чистой палочкой отделяют от стенок сосуда образовавшийся сгусток крови. Поверх сгустка в виде прозрачной, светлой, слегка желтоватой жидкости скапливается сыворотка. В последующем сосуд с кровью или сывороткой хранят в прохладном месте.
При долгом (более 2 сут) стоянии сосуда с кровью в теплом месте или в открытом виде наступает гемолиз. Эритроциты распадаются, кровь становится прозрачной, сыворотка — красной, непригодной для исследования. На качество сыворотки влияют также загрязнение, повторное замораживание и оттаивание, консервирование формалином, карболовой кислотой, подогревание и т. д.
Кровяной сгусток представляет собой склеенные между собой нитями и сгустками фибрина форменные элементы крови, образующиеся при свертывании последней. По мере выделения сыворотки (ретракция сгустка) кровяной cгусток постепенно уплотняется и уменьшается в объеме.

Материалы предоставлены SarstedtAG & Co., перевод на русский язык 2015 г.
Автор материала: Профессор, доктор естественных наук Ральф Лихтингхаген (Prof. Dr. Ralf Lichtinghagen) , ФРГ 2014 г.
При использовании этого материала необходимо ссылаться на автора и правообладателя.

«Особо большое значение придается получению пробы из кончика пальца, пятки или мочки уха в педиатрии и при проведении анализов Point Of Care Tests (РОСТ)- анализов у постели больного».

Что такое капиллярная кровь?

Капиллярная кровь представляет собой смесь крови из артерий, вен и капилляров, также интерстициальной и внутриклеточной жидкостей.

Внимание! Данная смесь жидкостей с учетом ее состава не пригодна для точного анализа свертываемости. Поэтому не предлагаются капилляры с цитратом.

Области применения проб капиллярной крови

педиатрия;
гериатрия;
у взрослых для анализа газов крови; определения уровня глюкозы и лактата;
анализы у постели больного.

Случаи, при которых исследование капиллярной крови исключено:

необходимый объем пробы крови более 1 мл (например, гемокультура);
коагулологические исследования;
воспалительные процессы:
шоковое состояние пациента.

1. Подготовка: — материал, — пациент, — место пункции.

3. Взятие пробы

Подготовка материалов

— перчатки, — тампон, — средство дезинфекции кожи,

— полуавтоматический одноразовый ланцет ( безопасный ланцет Safety),

— пробирка для пробы (капилляры для анализов газа крови (BGA), Micrivette, капилляры для взятия пробы на билирубин и т.д.)

— утилизационный контейнер Multi-Safe,

— пластырь, если необходимо (для маленьких детей рекомендуется с осторожностью из-за опасности проглатывания пластыря).

Подготовка пациента

— проинформировать пациента о цели взятия крови и о порядке процедуры,

— при необходимости усилить кровоснабжение места прокола путем прогревания.

Места пункци

Преимущества прогревания места прокола

— усиление кровотока почти в семь раз по сравнению с обычным,

— условие для капиллярных анализов газа крови.

Усиление кровотока ведет к артериализации капиллярной крови и, тем самым, к достижению приемлемой корреляции с анализами артериальной крови.

Прогревание места прокола

— ногу или руку пациента оборачивают тканью, прогретой до 39-40 град,

— оптимальный вариант допускает надевание поверх ткани резиновой перчатки,

— продолжительность прогрева от 3 до 5 минут,

— для капиллярного анализа газов крови у взрослых пациентов можно обработать мочку уха разогревающей мазью.

Прокол и взятие пробы

— нанести дезинфицирующее средство,

— дать полностью высохнуть (пока дезинфицирующее средство не испарится полностью);

— правильно зафиксировать рукой палец или пятку пациента;

— проколоть безопасным ланцетом.

Важные указания

-Первую каплю крови не использовать.

-Место прокола держать под наклоном вниз.

— Избегать размазывания капли крови.

— Правильно держать пробирку для сбора крови.

— Избегать повторно сильного надавливания (дойка).

Нарушение указаний ведет к гемолизу и загрязнению проб тканевой жидкостью!

1.1 1. Безопасный ланцет и безопасный ланцет-скальпель

Применение стерильных одноразовых изделий предотвращает получение травм от укола иглой, так как игла и лезвие до и после применения постоянно находятся в корпусе ланцета.

Безопасная пусковая кнопка предотвращает нечаянное и непредумышленное срабатывание системы.

Кроме этого, безопасные ланцеты-скальпели соответствуют директиве EC2010/32EU, BioStoffV и TRBA 250.

Номенклатура изделий – безопасный ланцет

Предлагаемые модели безопасных ланцетов рассчитаны на различные размеры игл и лезвий с различной глубиной прокола для пункции пальца, мочки уха и пятки

Исследования крови следует проводить при одинаковых условиях. Таковые обеспечиваются при взятии крови утором, за 2-3 часа до кормления животных. У крупных сельскохозяйственных животных кровь берут в стоячем положении, в специальном станке или в стойле. Беспокойных животных фиксируют на месте с помощью закруток и носовых зажимов, а пугливым животным завязывают глаза. У мелких животных взятие крови лучше производить, привязав их к столу или специальному станку. Для фиксации птиц разработаны специальные приспособления и столики. Для фиксации кур и уток предназначено устройство УФКУ-1. Оно состоит из металлического корпуса, в дне которого имеются пазы для фиксации крыльев, а на бортах вырезаны полукруглые желоба для фиксации ног с помощью планок и крючков. Птицу кладут на дно корпуса в спинном положении. Аналогичное устройство (СРФ-1) несколько больших размеров применяют для фиксации гусей и индеек. Оно выполнено в виде переносного стола на раздвижных опорах, который легко можно использовать в полевых условиях. При взятии крови из сердца птицу фиксируют на столе в спинном положении. В одну руку забирают обе ноги и оба крыла, а второй рукой берут голову и опускают ее ниже края стола. В таком положении птица находиться неподвижно, а зоб не мешает взятию крови.
На участке кожи, где предполагается произвести взятие крови, обязательно выстригают шерсть, кожу очищают спиртом или эфиром и насухо вытирают.
Следует всегда обращать внимание на то, чтобы кровь для исследования употреблялась только жидкая, свежевыпущенная, При взятии крови место укола нельзя сжимать и сдавливать, в противном случае в вытекающую кровь попадает тканевая жидкость, влияющая на показания исследования.
Повторное взятие крови для исследования из тех мест, где ранее уже бралась кровь, не рекомендуется. В случаях, когда получение крови из укола или разреза кожи затруднено вследствие плохого её вытекания, следует новое место разреза натереть эфиром или ксилолом и высушить ватой. После указанной манипуляции почти всегда удаётся получить кровь.
Небольшое количество крови у лошадей и крупного рогатого скота берут из вены угла глаза. Для этого нажатием пальца кровь задерживают в вене, которую прокалывают иглой. Обычно же кровь у крупного рогатого скота, свиней, коз, овец, собак, кошек берут из сосудов внутренней или наружной поверхности уха при помощи небольшого разреза скальпелем. Получение крови возможно также путём надреза края уха. У кроликов кровь получают из ушной вены, у морских свинок — из сердца, иглами соответствующего диаметра и длины. У крупного рогатого скота кровь можно взять также из разреза ножницами хвостовой складки. У верблюдов кровь берут из разреза или прокола кожи на горбе. У крыс и мышей кровь получают из хвоста, отрезая кончик его, после предварительного очищения и нагревания компрессом до 37- 40°С.
У птиц кровь получают из кожного разреза на гребне или берут из V. cutanea ulnaris или a. brachialis. Для этого на внутренней стороне крыла, над локтевым сочленением удаляют несколько перьев и слегка надрезают сосуд скальпелем или маленькими ножницами. Кровь у гусей берут из крыловой вены. Она расположена с внутренней стороны крыла и идет вдоль плечевой кости. Она хорошо заметна, так как является самым крупным сосудом в этой области. При фиксации птицу держат жестко за ноги, заворачивая голову за одно крыло и оттягивают другое крыло. Место взятия крови ближе к локтевому суставу, очищается от пуха, кожу дезинфицируют спиртом, и прокалывают вену, направляя иглу вдоль вены срезом вверх. Кровь легко стекает. Место укола тампонируется. Недостатком этого метода может является обильное кровотечение, которое бывает трудно остановить, особенно при высокой окружающей температуре. В области плеча, в месте расположения вены, подкожная клетчатка довольно рыхлая, что способствует легкому развитию гематом.
Для получения больших количеств крови прибегают к пункции вен. У лошадей, крупного рогатого скота, коз, овец и верблюдов кровь берут из яремной вены. На месте, где предполагается произвести прокол, выстригают шерсть и кожу дезинфицируют спиртом или 5%-ным раствором йода. Кровопускательную иглу предварительно кипятят в течение 5-10 минут. Для взятия крови большим пальцем левой руки нажимают на вену у основания, с левой стороны шеи. Задержка оттока крови вызывает набухание вены. Набухшая вена видна в виде толстого шнура. Кровопускательную иглу берут в правую руку, вводят под острым углом по направлению к голове и продвигают в полость сосуда. В случае, если кровь не будет вытекать, рекомендуется повернуть иглу вокруг её продольной оси и слегка продвинуть вперёд или назад. Во избежание образования гематомы при извлечении иглы из вены одновременно прекращают ее сдавливание.
У свиней в больших количествах кровь получают из хвоста, отрезая его кончик.
У птицы кровь в больших объемах берется из сердца. Получить кровь из сердца несколько сложнее, чем из гребня и из вены, и для этого необходим определенный навык. Кровь из сердца берут шприцем на 10 или 20 см3 с помощью толстой или тонкой иглы. Большим пальцем левой руки нащупывают углубление около краниальной части грудной кости, под углом 45° прокалывают иглой кожу и лежащие под ней ткани, попадая в грудобрюшную область. Затем иглу со шприцем переводят в горизонтальное положение, продвигают внутрь полости на несколько сантиметров. При попадании иглы в сердце ощущается сердцебиение, и кровь, пульсируя, попадает в шприц.
Порядок взятия крови для исследования должен быть следующим: стирают первую каплю, затем набирают кровь в капилляр для определения гемоглобина; далее берут кровь в смеситель для подсчёта лейкоцитов, потому что требуется сравнительно большое количество крови, затем в смеситель для подсчёта эритроцитов и, наконец, на предметных стёклах делают мазки и толстую каплю. После каждой манипуляции остатки крови стирают ватой.
Если взятие крови происходит одновременно у нескольких животных, то удобно пользоваться фотографическими ванночками или фанерой с укреплением меланжеров и стёкол, разложенных на каждое животное.
Цельная кровь, вышедшая из кровеносных сосудов, обладает способностью быстро сворачиваться, поэтому её необходимо стабилизировать антикоагулянтам. В настоящее время один из лучших антикоагулянтов — гепарин, так как использование других антикоагулянтов приводит к некоторому разбавлению крови, что в дальнейшем приходиться учитывать при проведении исследований. Гепарина, в отличие от других антикоагулянтов, достаточно 1 капли на 5 мл крови. Практически намного удобнее наливать в пробирку немного гепарина, смачивать им стенки пробирки и переливать в другую пробирку. Обработав необходимое число пробирок, остаток гепарина сливают.
Работая с цельной кровью, следует учитывать, что это живая ткань и в ней обязательно происходят — пусть и не столь интенсивно, как в организме, процессы обмена. Поэтому все гематологические исследования, проводимые с использованием цельной крови, должны проводиться в минимально короткие сроки. Стабилизированная кровь после длительного отстаивания или центрифугирования разделяется на форменные элементы (внизу пробирки) и плазму (вверху).
Сыворотка — жидкая часть крови, остающаяся после удаления из нее форменных элементов и белка фибрина. Она используется в биохимических и серологических исследованиях. Для получения сыворотки кровь берут в стерильные пробирки, вымытые в растворе мыла и промытые дистиллированной водой. Сыворотка лучше отделяется, если перед взятием крови стенки пробирок смочить теплым физиологическим раствором. Пробирки должны иметь комнатную температуру, так как кровь плотно пристает к стенкам пробирок и наступает частичный гемолиз эритроцитов. Кровь ставят в термостат при температуре 35°С на 1 час. Затем переносят ее на холод. Через 4 часа сыворотка в виде прозрачной жидкости отделяется от кровяного сгустка. Для лучшего выделения сыворотки образовавшийся сгусток фибрина отделяют от стенок пробирок, обводя стеклянной палочкой или проволокой. С целью быстрого получения сыворотки свернувшуюся кровь центрифугируют при 2000-2500 об/мин. в течение 15-20 минут. Готовую сыворотку сливают в чистую сухую пробирку.
Для взятия крови на сыворотку у птицы используются узкие пробирки, так как в отличие от других млекопитающих, у них ретракция кровяного сгустка относительно мала, и сыворотка отделяется в небольших количествах. После взятия крови пробирки наклоняют под углом 60 градусов. При вертикальном положении пробирок сыворотка отделяется значительно хуже. Вскоре после образования кровяного сгустка его обводят тонкой металлической иглой для лучшего отделения сыворотки. Пробирки на час помещают в термостат. Сыворотку сливают. Если попали эритроциты, ее центрифугируют на 1000-1500 оборотах в течение 10-15 минут.
В сыворотке содержится много различных органических соединений, поэтому ее, так же, как и цельную кровь, желательно исследовать сразу после получения. При необходимости более длительного хранения сыворотки ее можно консервировать. В качестве консервантов применяют мартиолят, тимол, борную кислоту и другие вещества. Консервант добавляется в очень малых количествах. Сыворотка также хорошо сохраняется при глубоком замораживании. В этом случае сыворотку разливают малыми порциями (по 1 мл), замораживают и хранят при — 20°С, по мере необходимости используя в работе.
Для получения плазмы крови в пробирку предварительно насыпают лимоннокислый натрий (из расчета 15-20 мг на 10 мл), щавелевокислые натрий, калий или аммоний (из расчета 30-15 мг на 10 мл). Можно использовать гепарин в виде порошка в количестве 2 мг на 10 мл крови. Взятую в пробирку кровь быстро и хорошо смешивают с порошком. Плазму отделяют от форменных элементов отстаиванием или центрифугированием в течение 15-20 минут при 2000-2500 об/мин.
Для того, чтобы путем гематологических исследований выявить разнообразные изменения, необходимо соблюдать ряд общих правил, иначе полученные результаты будут не верны.
Прежде всего, инструментарий и посуда для взятия крови и проведения исследований, должны быть безукоризненно чистыми, хорошо обезжиренными и простерилизованными. Для мытья пробирок и прочей стеклянной посуды лучше всего использовать раствор двухромовокислого калия в концентрированной серной кислоте (около 1%). Следует иметь в лаборатории заготовленный заранее насыщенный водный раствор двухромовокислого калия, который разводится концентрированной серной кислотой в соотношении 1:3 (разводить следует очень осторожно, так как жидкость сильно нагревается). В дальнейшем ей можно пользоваться в остывшем виде, пока она не изменит коричневато-красного цвета на зеленоватый.
Резиновые пробки идут с тальковым покрытием, поэтому их необходимо промывать в воде для удаления порошка. Затем пробки кипятят 5 минут в растворе разбавленной щелочи (0,5 н раствор), которую затем отмывают водой. Снова кипятят 5 минут в разбавленной соляной кислоте (1:25) и промывают в проточной воде до нейтральной реакции стекающей жидкости. После удаления покрывающего порошка резиновые пробки очень быстро портятся, поэтому их нельзя готовить много, а очистка производится по мере необходимости, для непосредственного применения. Хранить пробки лучше всего в прохладном месте, в плотно закрытой банке. Это особенно важно в летний период.
Следует также учитывать, что при исследовании крови приходиться работать с очень малыми количествами материала. Поэтому приступая к новым исследованиям, необходимо предварительно получить навык в соответствующем методе, причем обучение проводиться на чистых растворах, с известной концентрацией. Только после этого можно приступать к практическим исследованиям. Опыт и навык в микрометодике имеют еще большее значение, чем при обычных химических исследованиях.
Все исследования следует проводить посредством двух параллельных определений, из которых затем выводится средняя величина. Если расхождение между определениями велико, исследование следует считать неудавшимся и провести повторное.

источник